Biuro organizacyjne: 42 630-01-88 biuro@grupamedica.pl

Lista abstraktów zakwalifikowanych do prezentacji w sesji plakatowej z zakresu

Pobierz listę abstraktów 1. The role of the exo-xis region in the development of Shiga toxin-converting bacteriophage Φ24B.
Necel A., Licznerska K., Bloch S., Nejman-Faleńczyk B., Dydecka A., Topka G., Gąsior T., Węgrzyn A., Węgrzyn G.
2. Ribosomal RNA depletion in non-model bacterial RNA-seq libraries using duplex-specific nuclease
Łukasiak J., Ryngajłło M., Kubiak K.,, Szemraj J.
3. NGS and systematic database as modern tools in metagenomics
Gomulska M., Frączek P., Sroka-Oleksiak A., Gosiewski T., Radkowski P., Ludwig-Gałęzowska A.H., Wołkow P.
4. Screening and characterisation of potential cyclic depsipeptide producers among Hypocreales fungi
Urbaniak M., Koczyk G., Stępień Ł.
5. Polyphyletic nature of Bacillus cereus isolates harbouring Bacillus anthracis-like plasmids
Marjańska P. S., Drewnowska J. M., Święcicka I.,
6. Mutations in the Dpb2 subunit of DNA polymerase epsilon affect the Nrm1 branch of the DNA replication checkpoint
Dmowski M., Jonczyk P., Fijałkowska I. J.
7. N-terminal dimerization domain of the main Helicobacter pylori oxidoreductase HP0231 plays a vital role in its functioning
Bocian-Ostrzycka K.M, Pisarczyk K., Jastrząb K., Jagusztyn-Krynicka K.E
8. The disruption of pdtaS affects Mycobacterium smegmatis and Mycobacterium tuberculosis
Dadura K., Płocińska R., Dziadek J.
9. Characteristics of Δrv0260c Mycobacterium tuberculosis and Δmsmeg0432 Mycobacterium smegmatis mutants.
Antczak M., Płocińska R., Dziadek J.
10. ppGpp and DksA – the influence on tRNA promoters transcription activation
Milewska K., Łyżeń R.
11. Biodiversity among bacteriophages isolated from a single environmental source
Topka G.*, Bloch S., Nejman-Faleńczyk B., Jurczak-Kurek A., Dydecka A., Necel A., Licznerska K., Gąsior T., Węgrzyn G., Węgrzyn A.
12. Influence of rehydration process conditions in active dry industrial Saccharomyces cerevisiae cider-making yeast strains (ADY) for
expression of GPD1 and SIP18 genes
Goncerzewicz A., Misiewicz A., Kamińska-Wojteczek K., Młynarczyk I.
13. Structural changes in BNC induced by genetic modification of bionanocellulose producer
Jacek P., Kubiak K., Bielecki S.
14. Influence of overexpression of DnaK on Gluconacetobacter hansenii, an efficient bacterial cellulose producer
Cielecka A., Jędrzejczak-Krzepkowska M., Bielecki S.
15. The assessment of the significance of mutations associated with resistance of Mycobacterium tuberculosis to isoniazid
Żaczek A., Dziadek J.
16. Microsporosis of the scalp in 4 – year-old girl – the identification of the pathogen by conventional and molecular methods
Błaszczyk L., Kubisiak-Rzepczyk H., Hasse-Cieślińska M., Adamski Z.
17. Analysis of antibiotic resistance genes in sample of water from Vistula river
Wolinowska R., Wróbel K., Zajęcki K.
18. Species of Borrelia burgdorferi sensu lato in humans and dogs
Skotarczak B.
19. Changes in the level of expression of the Borrelia burgdorferi plasmid-derived genes under stress conditions.
Bloch S., Licznerska K., Felczykowska A., Węgrzyn A., Węgrzyn G., Nejman-Faleńczyk B.
20. The lack of the Hfq protein in Escherichia coli cells affects plasmid DNA replication
Cech G.M., Chamera S., Szalewska-Pałasz A., Węgrzyn G.
21. Prevalence of Borrelia burgdorferi sensu lato in Ixodes ticks contracted to analysis in Diagnostyka Sp. z o.o. using real time PCR technique.
Piotrowska-Mietelska A., Ptasiński M., Machnik G., Gąsecka-Czapla M., Pelc E., Kaczmarczyk G., Sokołowska B. and Swadźba J.
22. Comparative analysis of genomic sequences of Shiga toxin-converting bacteriophages
Gąsior T., Licznerska K., Dydecka A., Bloch S., Topka G., Nejman-Faleńczyk B., Węgrzyn G., Węgrzyn A.
23. Mutations in dnaE differentially affect the fidelity of leading- and lagging-strand replication in E. coli
Makiela-Dzbenska K., Maslowska K.H., Schaaper R.M., Fijalkowska I.J.

Pobierz listę abstraktów 1. Application of COS markers for comparative mapping of Rfc1 gene in two mapping population of rye
Orłowska M., Hackauf B., Stojałowski S.
2. Genomic relationships within lupin species at chromosomal level
Susek K., Bielski W.K., Wyrwa K., Koczyk G., Brąszewska-Zalewska A., Naganowska B.
3. Experimental system for functional analysis of barley GSKs – genes encoding brassinosteroid regulators
Groszyk J., Yanushevska Y., Zieleziński A., Nadolska-Orczyk A., Karłowski W.M., Orczyk W.
4. Genetic variability of selected forest trees revealed by peroxidase polymorphism
Krzakowa M.
5. Gene editing of the dormancy –specific loci in Arabidopsis by TALEN induced mutagenesis
Linkiewicz A. M., Michalski K., Sowa S.
6. Analysis of glutenin subunits in wheat breeding materials by SDS-PAGE method
Kała M., Przyborowski M., Ługowska B., Gasparis S., Orczyk W., Nadolska-Orczyk A.
7. Variability in puroindoline alleles and their influence on grain hardness in selected cultivars of Triticum aestivum L.
Przyborowski M., Gasparis S., Kala M., Orczyk W., Nadolska-Orczyk A.
8. Salinity tolerance in barley is elevated by silencing of brassinosteroid signaling regulator
Yanushevska Y., Groszyk J., Zieleziński A., Nadolska-Orczyk A., Karłowski W.M., Orczyk W.
9. ZPR1 is a nuclear light-dependent factor adapting the circadian oscillation of potato StBBX24 gene to the light period
Kiełbowicz-Matuk A., Czarnecka J., Banachowicz E., Rorat T.
10. Gene expression in response to salt-stress in halophytic beet, Beta vulgaris ssp. maritima
Skorupa M., Tyburski J., Gołębiewski M., Tretyn A.
11. Genome-wide association study reveals candidate genes determining cold-tolerance of modern maize
Grzybowski M., Solecka D., Frankiewicz K., Sowiński P.
12. Crosstalk between photoperiod and temperature on flowering time regulation – a case study of the narrow-leafed lupin
Rychel S., Książkiewicz M., Wolko B., Nelson M.N.
13. Effect of cadmium stress on transcript level of CAT in Quercus robur seedlings.
Kowalczyk K., Zapalska M., Nowak M., Dudziak K.
14. Analysis of Cu/Zn-SOD gene expression in Quercus robur seedlings treated with cadmium.
Zapalska M., Nowak M., Dudziak K., Kowalczyk K.
15. Differential response of cucumber genotypes to the hypoxia stress
Czernicka M., Kołton A.
16. Variability of phytosterol content in oil of white mustard (Sinapis alba L.)
Bartkowiak-Broda I., Rudzińska M., Piętka T., Ogrodowczyk M.
17. Dehydrative stresses change the transcript abundance of PIP and TIP aquaporins in Festuca species
Pawłowicz I., Rapacz M., Perlikowski D., Gondek K., Kosmala A.
18. Identification and profiling LlIDA gene expression in the flower abscission zone of Lupinus luteus
Wilmowicz E., Kućko A., Katarzyna P., Katarzyna M., Gadzikowska A, Kopcewicz J.
19. Differences in expression of cytochrome P450 genes during cucumber flower morphogenesis
Pawełkowicz M., Skarzyńska A., Pląder W., Przybecki Z.
20. Differential expression of paralog genes in carotenoids biosynthetic pathway in carrot
Klimek-Chodacka M., Oleszkiewicz T., Baranski R.
21. The impact of exogenous abscisic acid on LlSVP gene expression in Lupinus luteus.
Wojciechowski W., Klajn N., Banach M., Glazińska P., Marciniak K., Kopcewicz J., Tretyn A.
22. Evaluation of pre-harvest sprouting susceptibility in selected inter-cultivar hybrids of winter wheat
Simlat M., Wójtowicz T., Moś M.
23. Analysis of the correlation between the content of benzoxazinoids and ScBx5 gene expression in rye (Secale cereale L.)
Makowska B., Stochmal A., Kowalczyk M., Orczyk W., Rakoczy-Trojanowska M.
24. Assessment of molecular markers usefulness for identification of resistance to true powdery genes in breeding material
Bujak H., Nowosad K.
25. Diploid potato collection as a source of resistance and quality traits for breeding
Smyda-Dajmund P., Wasilewicz-Flis I., Strzelczyk-Żyta D., Jakuczun H. , Zimnoch-Guzowska E.
26. Studies on the molecular mechanisms of resistance to clubroot disease (Plasmodiophora brassicae) in plants of genera Brassica
Michalczuk L., Robak J., Smolińska U., Kowalska B., Markiewicz M., Czubatka-Bieńkowska A., Czajka A.
27. Profiling resistance of the narrow leafed lupin to pathogenic fungi: Colletotrichum lupini and Diaporthe toxica
Książkiewicz M., Kaczmarek J., Majcherkiewicz K., Rudy E., Bielski W., Rychel S., Jędryczka M., Naganowska B., Wolko B.
28. How Plasmodiophora brassicae usurps plant developmental pathways during infection and further disease progression
Malinowski R.
29. Development of DArTseq markers for genetic mapping of angular leaf spot resistance in cucumber (Cucumis sativus L.)
Słomnicka R., Olczak-Woltman H., Korzeniewska A., Kilian A., Niemirowicz-Szczytt K., Bartoszewski G.
30. Phenotyping oilseed rape (Brassica napus) genotypes during interaction with necrotrophic fungus Alternaria brassicicola
Jęcz T., Macioszek V.K., Schoonbeek H.J., Ridout Ch., Kononowicz A.K.
31. Experimental system for functional analysis of barley GSKs – genes encoding brassinosteroid regulators
Groszyk J., Yanushevska Y., Zieleziński A., Nadolska-Orczyk A., Karłowski W. M., Orczyk W.
32. Interspecific crosses in the Avena L. genus
Chrząstek M., Koroluk A., Głębocka K., Ostrowska A.
33. Analysis of the correlation between the content of benzoxazinoids and ScBx5 gene expression in rye (Secale cereale L.)
Makowska B., Stochmal A., Kowalczyk M., Orczyk W., Rakoczy-Trojanowska M.
34. Phytopathological and cytogenetic analysis of Brassica plants with known resistance to clubroot
Kasprowicz M., Książczyk T., Jędryczka M.
35. Analysis of selected nuclear genes in species of the genus Erica
Gomolińska A.M.
36. Study of the development of distinct gene pools in Brassica napus L.
Sosnowska K.*, Liersch A., Bocianowski J., Szała L., Mikołajczyk K., Cegielska-Taras T.
LODZ • September 19-22, 2016 POSTERS – PLANT GENETICS R
37. The development of homozygous lines of open-pollinated and self-incompatible white mustard plants (Brassica hirta L.)
Szała L.*, Sosnowska K., Kozłowska K., Piętka T., Cegielska-Taras T.
38. Genotyping of Lupinus angustifolius L. core collection using sequence-defined markers linked to agronomic traits
Bielski W., Plewiński P., Rudy E., Rychel S., Książkiewicz M., Naganowska B., Wolko B.
39. AFLP and STR markers – a valuable tool for genetic diversity analysis of winter rapeseed (B. napus L.)
Liersch A.*, Mikołajczyk K., Popławska W., Spasibionek S., Cegielska-Taras T., Bocianowski J., Nowakowska J., Bartkowiak-Broda I.
40. Characterization of Chinese cabbage doubled haploid plants
Chuda A., Adamus A., Chachlowska D., Ślęczek S., Samek L., Pieniążek U.
41. Wykorzystanie markerów SSR do oceny zróżnicowania genetycznego linii wsobnych kukurydzy
Nowosad K., Bujak H.
42. Analysis of genes expression encoding TaMAPK3 in Triticum aestivum L. under drought treatment
Dudziak K., Nowak M., Kowalczyk K.
43. Phylogeny of symbiotic genes of root nodule bacteria infecting Genista germanica
Kalita M., Małek W., Jurkiewicz R., Wdowiak-Wróbel S., Wójcik M.
44. Genotype by environment interaction for oil content in winter oilseed rape (Brassica napus L.) using AMMI model
Nowosad K., Liersch A., Popławska W., Bocianowski J.
45. A new source of the potato resistance against virulent pathotypes of synchytrium endobioticum
Plich J., Przetakiewicz J., Śliwka J., Flis B., Zimnoch-Guzowska E.
46. Correlations between LlGAMYB and LlMIR159 genes expression during generative development of Lupinus luteus L.
Marciniak K., Glazińska P, Wilmowicz E., Kućko A., Wojciechowski W., Kopcewicz J.
47. Assessment of genetic diversity within a hybrid cultivar of rye by mean DArTseq technology
Stojałowski S., Orłowska M., Sobczyk M., Góralska M.

Pobierz listę abstraktów 1. Wykorzystanie genu CHD1 w identyfikacji płci u monomorficznej rasy gołębi
Utilisation of the CHD1 gene in sex identification in monomorphic pigeons breed
Miąsko M., Gruszczyńska J., Florczuk P., Alama A., Łukasiewicz M.
2. Methylation patterns of SOX9, SOX3 and WNT4 genes in gonads of dogs with XX (SRY-negative) disorder of sex development
Salamon S., Flisikowski K., Świtoński M.*
3. Comparative sequence analysis of APC and TAP1 genes in genetically modified pig-models for human colorectal cancer
Perkowska A., Flisikowska T., Flisikowski K., Kind A., Schnieke A., Świtoński M.*
4. Imprinting status of INPP5F var.2 in pigs
Oczkowicz M., Ropka-Molik K., Piórkowska K., Piestrzyńska-Kajtoch A.
5. Variant calling analysis based on porcine transcriptome data
Piórkowska K., Żukowski K., Ropka-Molik K.
6. Exercise regulation of genes belonging to FoxO signaling pathway in Arabian horse blood tissue
Ropka-Molik K., Stefaniuk-Szmukier M., Piórkowska K., Żukowski K
7. The use of common PCR primer to identify 10 animal species in nonstandard templates
Natonek-Wiśniewska M.
8. Polymorphisms within CFTR gene are associated with activity of antioxidant enzymes in sperm of Holstein-Friesian bulls
Hering D.M., Kordan W., Lecewicz M., Kamiński S.
9. Diagnostics of horse karyotype microrearrangements using array CGH
Bugno-Poniewierska M., Kowalska K., Gurgul A., Stefaniuk-Szmukier M., Pawlina K.
10. Frequency of PLL mutation (c.1473+1 G>A ADAMTS17) in the PLL-affected breeds
Lisiak-Teodorczyk K., Maćkowski M., Cholewiński G., Wojciechowicz J., Antosik P.
11. STRs multiplex for individual identification of red deer.
Radko A., Szumiec A.
12. The influence of sex determination system and faithfulness of pairs on sex chromosomes evolution
Posacki P. Mackiewicz D., Mackiewicz P.
13. Nuclear organization during porcine in vitro adipogenesis
Stachecka J., Kociucka B., Szczerbal I.
14. Polymorphism of TP53 and CSF1R genes in genetically modified pigs at the APC locus
Sikorska A., Flisikowska T., Flisikowski K., Kind A., Schnieke A., Świtoński M.*
15. An assessment of population structure and genetic diversity in ten cattle breeds using a whole genome SNP panel.
Jasielczuk I. Gurgul A., Szmatoła T., Radko A., Ząbek T., Bugno-Poniewierska M.
16. The expression of milk protein genes in the MAC-T cell line
Rędzia A.*, Ingram P., Szipluk K.W., Jędrzejczak-Silicka M.
17. Development of efficient method for isolation of high-quality mRNA from high-lipid content animal brain tissue
Żebracki K., Koper P., Skorupska A., Mazur A.
18. Doubly uniparental inheritance of mitochondrial genomes in the swollen river mussel Unio tumidus (Bivalvia: Unionidae)
Soroka M., Burzyński A.
19. Association of Tumor Necrosis Factor – alpha gene polymorphism with milk quality of Polish Holstein-Friesian cattle
Zabolewicz T., Barcewicz M., Hering D. M., Czarnik U.
20. Genetic background of fat deposition in gilts
Sadkowski S, Szydlowski M.
21. Hoxb8 gene polymorphism in fur chewing chinchilla – preliminary research
Guja I.*, Łapiński S., Niedbała P.
22. Expression of cathelicidin genes in bovine uddercisternal lining epithelial cells infected with staphylococci
Reczyńska D, Kościuczuk E., Jarczak J., Lisowski P., Marczak S., Zwierzchowski L., Bagnicka E.
23. Histone modifications at promoter regions of key genes involved accumulation of adipose tissue in the pig
Kociucka B., Stachecka J., Szydlowski M., Szczerbal I.
24. DNA methylation patterns in the GNAS locus of the horse in three kinds of tissue
Ząbek T., Semik E., Jasielczuk I., Fornal A.
25. Polymorphism and expression of bovine insulin-like growth factor 2 receptor (IGF2R) gene*
Dux M., Muranowicz M., Miller M., Bagnicka E., Flisikowski K., Hyżorek-Robakowska D., Lisowski P., Siadkowska E., Zwierzchowski L.
26. Transcript abundance of genes regulating lipid metabolism in follicular cells in relation to fatty acid content in follicular fluid and lipid
droplets number in bovine oocytes
Warzych E., Pawlak P., Cieslak A., Pszczola M., Lechniak-Cieslak D.
27. Associations between polymorphism within TNFα gene and selected subsets and blood indices in cows naturally infected with the BLV
Bojarojć-Nosowicz B., Kaczmarczyk E., Jastrzębska A.
28. The influence of different diets on transcriptional and methylation profiles of the Fto and Irx3 genes in the rat
Nowacka-Woszuk J., Pruszynska-Oszmalek E., Szydlowski M., Szczerbal I.
29. Taltirelin (thyrotropin-releasing hormone analog) increases the collagen content in myofibroblasts derived from the myocardial infarction
scar in rats
Krzymińska A., Drobnik J., Olczak S. Piera L., Ciosek J.
30. Cry1 gene polymorphism in pigeons (Columba Livia)
Dybus A., Konieczna A., Żurawska M., Cichy A., Juszczak M., Proskura W., Lanckriet R.
31. Chromosomal regions for body weight in broiler chickens
Graczyk M., Reyer H., Wimmers K. Hawken R., Szwaczkowski T.
32. The level of MT-CO2 gene diversity of a non-native raccoon dog in Poland: comparison with farm and wild Russian population
Horecka B., Kasperek K., Jeżewska-Witkowska G.
33. Comparative cytogenetic analysis of two Erinaceidae species
Grzesiakowska A., Kuchta-Gładysz M, Baran P., Guja I., Szeleszczuk O.
34. The effect of resveratrol or lycopene on DNA damage induced by ionizing radiation in germ and somatic cells of mice
Dobrzyńska M.M., Gajowik A.
35. Analysis of chromosome instability in selected species of Mammalia
Kuchta-Gładysz M., Grzesiakowska A., Otwinowska-Mindur A., Niedbała P., Wójcik E., Słonina D., Szeleszczuk O.
LODZ • September 19-22, 2016 POSTERS – ANIMAL GENETICS Z
36. Identification of mutations and gene expression profile of BMP-15 and GDF-9 in Romanowska and Wrzosówka sheep breeds
Smołucha G., Piestrzyńska-Kajtoch A.
37. The consequences of IVM medium supplementation with follicular fluid become apparent at the blastocyst stage as revealed by gene
expression analysis
Pawlak P., Maciejewska E., Małyszka N., Warzych E., Madeja Z. E., Lechniak-Cieślak D.
38. The effect of diet supplemented with omega-6 and omega-3 fatty acids on the porcine muscle transcriptome.
Ogłuszka M., Szostak A., te Pas M.F.W., Poławska E., Urbański P., Blicharski T., Pareek Ch.S., Juszczuk-Kubia E., Dunkelberger J.R. , Horbańczuk J. O., Pierzchała M.
39. Establishment of primary chondrocyte cell lines obtained from horse articular cartilage for future epigenetic analyses
Kowalska K., Witarski W., Ząbek T., Bugno-Poniewierska M.
40. Allele-specific expression of genes involved in adipogenesis and lipid metabolism in the pig
Stachowiak M., Szczerbal I., Flisikowski K.
41. Analysis of Sox9 gene expression in the three- and six-month testis piglets by use of Real-Time PCR method
Czerkies M., Wenda A., Tabor-Osińska S., Jędrzejczak-Silicka M., Szatkowska I., Pietruszka A.
42. Liver transcriptome profiling in pigs of a PUFA-enriched diet
Szostak A., Ogłuszka M., te Pas M.F.W., Poławska E., Urbański P., Blicharski T., Horbańczuk J. O., Pierzchała M.
43. Application of molecular analysis methods in the study of genetic variability of European pond turtle in Poland
Kruszyński W., Luberda M., Nowak B.
44. Analysis of breeding work of hucul horses
Socik M., Jeżewska-Witkowska G. Socha S.
45. Statictical analysis of conformation traits of rabbits breed New Zealand white in the breeding farm
Kołodziejczyk D., Gontarz A., Steć A., Gacek L. , Jeżewska-Witkowska G., Socha S.
46. Genetic diversity of a single-nucleotide polymorphism panel of two horse breeds on the OpenArray
Fornal A., Piestrzyńska-Kajtoch A., Radko A.
47. Selection of endogenous reference genes for PRNP gene expression studies in different ovine tissues.
Piestrzyńska-Kajtoch A., Smołucha G., Oczkowicz M., Rejduch B.
48. Genetic consequences of a rapid range expansion in wasp spider Argiope bruennichi
Wawer W., Rutkowski R., Lutyk D., Pusz-Bocheńska K., Bogdanowicz W.
49. Influence of exercise on genes expression associated with lipid metabolism in Arabian horse blood
Stefaniuk-Szmukier M., Ropka-Molik K., Piórkowska K., Żukowski K., Bugno-Poniewierska M.
50. Differental expression of zelected genes in placenta of the intrauterine restricted growth fetuses in cattle
Rutkowska K., Pausch H., Oprządek J., Flisikowski K.
51. Genome-wide structural aberrations characteristic in canine mammary tumours using SNP genotyping assay
Surdyka M., Gurgul A., Bugno-Poniewierska M., Pawlina K., Szmatoła T., Slaska B.
52. Mapping of genomic SNP positions for selected cattle genome assemblies
Żukowski K., Topolski P.
53. Identification of a mutation in exon 10 of the gene CLPTM1 associated with cleft palate in French Bulldogs
Florczuk P., Gruszczyńska J., Łobodzińska A., Fiszdon K., Filipiuk M., Bartyzel B.J., Jurka P.
54. High and low SCNT efficiency swine adipose tissue mesenchymal stem cells show differences in DNA methylation
Grzybek M.
55. Genotyping-by-sequencing technique performance in different livestock species
Gurgul A., Miksza-Cybulska A., Szmatoła T., Jasielczuk I., Bugno-Poniewierska M.
56. The bias in runs of homozygosity length estimation based on microarray and sequencing data
Szmatoła T., Gurgul A., Jasielczuk I., Ząbek T., Bugno-Poniewierska M.
57. Microsatellite polymorphism and its association with production traits in the farm raccoon dog (Nyctereutes procyonoides)
Zatoń-Dobrowolska M., Mucha A., Morrice D., Wierzbicki H., Moska M., Przysiecki P., Dobrowolski M.

Pobierz listę abstraktów 1. MED13L haploinsufficiency syndrome in the girl with 12q24.21q24.23 microdeletion
Białecka M., Kucharczyk M., Młynek M., Jędrzejowska M.,, Kugaudo M., Gutkowska A., Marczak A., Sielska-Rotblum D., Krajewska‑Walasek M.
2. A novel de novo – 20q13.11q13.12 microdeletion in a boy with intellectual disability
Bernaciak J., Wiśniowiecka-Kowalnik B.J., Kutkowska-Kaźmierczak A., Castañeda J., Nowakowska B.A.
3. The clinical and cytogenetic characteristics in a patient with a very rare deletion in the region of 5q31.2 – a new microdeletion
syndrome?
Kędzior M.E., Bartnik M.I., Kutkowska-Kaźmierczak A., Bezniakow N., Nowakowska B.A.
4. Complex chromosome rearrangements in a patient with moderate intellectual disability
Iliszko M.¹, Lipska-Ziętkiewicz B.¹, Wierzba J.², Koczkowska M., Kardaś I.¹, Limanówka M.², Limon J.¹
5. Dysmorphic features, short stature and hypertrophic cardiomyopathy in girl with microduplications in 22q11.2, 10q24.1 and Titin
gene mutation
Jakubiuk-Tomaszuk A., Kierus K., Pietrzak R., Gos M., Motkowski R., Sota J., Gambin T., Sobecka K., Nowakowska B., Waś A., Sendrowski K.
6. Chromosomal aberrations and genomic rearrangements in the embryo as the cause of spontaneous abortions – analysed with array-
CGHMatuszewska K., Badziąg-Leśniak N., Piechota M., Sowińska-Seidler A., Wujak N., Kołowska J., Olejniczak T., Puacz P., Latos-Bieleńska A.,
7. Using yeast model to study the pathogenesis of chorea -acanthocytosis, the rare human neurodegenerative genetic disorder.
Rzepnikowska W., Flis K., Kaminska J., Grynberg M., Urbanek A., Ayscough K., Zoladek T.
8. Clinical observation of a child with prenatally diagnosed (arrayCGH) partial trisomy of chromosome 20.
Stembalska A., Justyna G., Łaczmańska I., Sąsiadek M.M.
9. Intrafamilial variability of the pericentric inversion of chromosome 18
Kiśluk J., Jakubiuk-Tomaszuk A., Poskrobko E., Zdrodowska J., Nowakowska B.
10. Microdeletion of 7q36.1q36.2 in the clinical and molecular practice: a case report
Sielska-Rotblum D., Kucharczyk M., Młynek M.,Iwanowski P., Kugaudo M., Białecka M., Marczak A., Gutkowska A., Krajewska-Walasek M.
11. Pedigree segregation analysis in carriers of reciprocal chromosome translocation involving chromosome 11.
Stasiewicz-Jarocka B., Duda J., Rączkiewicz B., Panasiuk B., Midro A.T.
12. Experience of a scientific laboratory in achieving accreditation of Polish Centre for Accreditation for aCGH
Łaczmańska I., Gil J., Kozłowska J., Skiba P., Czemarmazowicz H., Makowska I., Szmida E., Sąsiadek M.
13. Pallister-Killian syndrome – the prenatal diagnostic challenge
Kucińska-Chahwan A., Massalska D.1, Roszkowski T.1, Ilnicka A.2, Jóźwiak A.2, Obodzińska I.2, Gawlik-Zawiślak S.2, Nowakowska B.3
14. Prenatal diagnosis of campomelic dysplasia – description of five cases
Dudarewicz L., Wieczorek-Cichecka N., Chilarska T., Biegański T., Grzesiak M., Krąpiec D., Kozłowska M., Hawuła W., Jakubowski L.
15. Ograniczenia metody MLPA w diagnostyce zespołów mikrodelecji/mikroduplikacji regionów subtelomerowych.
Skiba P., Gil J., Łaczmańska I., Szczepaniak M., Szmida E., Sąsiadek M.M.
16. Genome changes induced by ring chromosomes r(13) and r(14)
Panasiuk B., Zollino M., Dąbrowska M., Stasiewicz-Jarocka B., Orteschi D., Midro A.T.
17. Identification of familial occurrence microdeletion at 16p11.2 region with the use of array-CGH
Wujak N., Matuszewska K., Milanowska K., Piechota M., Straburzyński M., Łacna K., Latos-Bieleńska A.,
18. Partial trisomy 18 with interstitial deletion found in mosaic state as one of two simultaneously present marker chromosomes
Podbioł-Palenta A., Kowalska-Pawlak A., Liehr T., Rincic M., Remiszewska B., Wawrzkiewicz-Witkowska A.,Tomaszewska A., Budziński D.
19. Prenatal diagnosis of interstitial 10q24.32 duplications associated with split hand and foot malformation by array CGH
Smyk M., Węgrzyn P., Runge A., Sobecka K., Kędzior M., Obersztyn E., Nowakowska B.A.
20. A small supernumerary marker chromosome detected prenatally in a fetus with abnormal eye development
Ryłów M., Pietrzyk A., , Litwińska Z., Studniak E., Kilian A., Rzepka R., Świderski S., Łoniewska B., Dołęgowska B., Zajączek S.,
21. Diagnostic utility of Microfluidics- FISH in prenatal diagnosis.
Pietrzyk A., Rylów M., Studniak E., Gronwald J., Piotrowski K. Zajaczek S.
22. Microdeletion of 2q23.1 encompassing the MBD5 gene – clinical and molecular characterization of the syndrome
Młynek M., Kucharczyk M., Kugaudo M., Gutkowska A., Białecka M., Marczak A., Sielska-Rotblum D., Krajewska-Walasek M.
23. 22q12.1q12.2 deletion in a patient with phenotypic features of Goldenhar syndrome.
Piotrowicz M., Hawuła W., Wieczorek-Cichecka N., Kędzior M., Nowakowska B., Jakubowski L.
24. Genetic testing of spontaneous abortions using array comparative genomic hybridization and Rapid-FISH methods
Sobecka K., Bartnik M.I., Smyk M., Wiśniowiecka-Kowalnik B.J., Deperas M., Łuszczek A.M., Michalak E.B., Klepacka T.A.M., Nowakowska B.A.
25. Variants in NLRP7 and C6orf221 are not a common risk factor for molar pregnancy in sporadic or familiar cases.
Pinkier I., Jamsheer A., Rybak M., Wysocka U., Jakubowski L., Gach A.
26. A rare case of foetal survival of trisomy 22 into the third trimester
Pesz K., Jagielska G., Skiba P., Kozłowska J., Sąsiadek M.M.
27. Novel sequence of Pregnancy-Associated Glycoprotein-like family (within exon 2 and intron B) identified in the human genome*
Majewska M., Lipka A., Gowkielewicz M., Jóźwik M., Panasiewicz G., Bossowska A., Szafrańska B.
28. Killer cell immunoglobulin-like receptor genes polymorphism in recurrent implantation failure following in vitro fertilization –
a preliminary study
Nowak I., Wilczyńska K., Jakubowska A., Malinowski A., Wilczyński J.R., Radwan M., Radwan P., Kuśnierczyk P.
29. Mutations in the PCDH19 gene in Polish patients with Dravet –like syndrome phenotype.
Górka-Skoczylas P., Hoffman-Zacharska D., Duszyc K., Szczepanik E., Terczyńska I., Bal J.
30. A novel variant p.Ile207Met in FOXG1 responsible for Rett-like phenotype.
Długoszewska M., Gos M., Antczak-Marach D., Hoffman-Zacharska D., Bal J. , Szczepanik E.
31. Screening program for cystic fibrosis – 10 years of experience
Sobczyńska-Tomaszewska A., Ołtarzewski M., Czerska K., Sands D., Pęciłło A., Kunkiewicz A., Tysarowski A., Kacprzak M., Smolińska‑Król K., Szymanik-Niewęgłowska A., Witkowska E.
32. SNPs located in Toll-like receptor genes in development of Toxoplasma gondii infection in pregnant women
Wujcicka W., Wilczyński J., Nowakowska D.
33. Association of Toll-like receptor genes polymorphisms with infectious mononucleosis
Jabłońska A., Studzińska M., Szenborn L., Karlikowska-Skwarnik M., Wiśniewska-Ligier M., Gęsicki T., Paradowska E.
34. TLR3 and TLR7 polymorphisms in children with cytomegalovirus infection
Studzińska M., Jabłońska A., Wiśniewska-Ligier M., Nowakowska D., Gaj Z., Leśnikowski Z.J., Woźniakowska-Gęsicka T., Wilczyński J., Paradowska E.
LODZ • September 19-22, 2016 POSTERS – HUMAN GENETICS G
35. Role of OAS gene polymorphisms in prediction of outcomes after interferon treatment for children infected with HBV
Domagalski K., Pawłowska M., Zaleśna A., Pilarczyk M., Rajewski P., Halota W., Tretyn A.
36. Toward personalized medicine in hepatitis B: searching for host factors affecting treatment outcome using MALDI-TOF MS
Woziwodzka A.*, Rybicka M., Romanowski T., Sznarkowska A., Dręczewski M., Stalke P., Bielawski K.P.
37. Are IL-10 SNPs associated with severity of disease and response to therapy in chronic hepatitis C?
Świątek-Kościelna B., Kałużna E., Strauss E.,, Januszkiewicz-Lewandowska D.,,, Bereszyńska I., Rembowska J., Barcińska D., Mozer‑Lisewska I., Nowak J.
38. Role of selected exo- and endogenous factors in the etiopathogenesis of recurrent urinary system inflammations and malignant
process preinitiation
Kałużewski B., Morzuch L., Bednarek M., Kałużewski T., Jędrzejczyk A., Marks P., Rożniecki M.
39. Biallelic heterozygous WDR35 mutations as the most common cause of Sensenbrenner syndrome in a Polish patients.
Walczak-Sztulpa J., Pesz K., Arts H., Wieczorek-Cichecka N., Wawrocka A., Chrul S., Falek O., Jakubowski L., Chrzanowska K., Latos‑Bielenska A.
40. Aminoglycoside-stimulated translational readthrough of premature termination codons in primary ciliary dyskinesia
Dąbrowski M.*, Bukowy-Bieryllo Z.*, Witt M., Zietkiewicz E.
* – both authors have equally contributed to this work
41. Novel ABCA4 genomic rearrangements in Polish patients with Stargardt disease.
Wicher K., Straburzyński M., Wawrocka A., Skorczyk-Werner A., Krawczyński M.R.,
42. Role of cytokine-cytokine receptor interaction and Rho cell motility signaling pathway in etiology of esophageal atresia
Jakubiak A., Skiba P., Leszczyński P., Sąsiadek M.M., Śmigiel R.
43. Genetic variation of the ATP-binding cassette transporter gene ABCG2 in the Polish population
Słomka M., Korycka-Machała M., Dziadek J., Strapagiel D.
44. Telomere shortening causes changes in transcriptome of patients with osteoarthritis
Kuszel Ł., Trzeciak T., Begier-Krasińska B., Richter M., Czarny-Ratajczak M.
45. An improved algorithm for filtering and trimming Next Generation Sequencing (NGS) reads
Grzemski A.
46. Application of NGS revealed Usher Syndrome in brothers initially diagnosed as NSHL
Kujko A., Niepokój K., Wertheim-Tysarowska K., Grabarczyk A., Sota J., Gambin T., Jurczak P., Bal J.
47. Genotype-phenotype correlations among Polish hearing loss patients with TMPRSS3 mutation
Lechowicz U., Pollak A., Podgorska A., Stawinski P., Oldak M., Skarzynski H., Ploski R.
48. Genetically related hearing loss– results of exome sequencing in Polish patients.
Pollak A., Lechowicz U., Podgorska A., Stawinski P., Kosińska J., Skarzynski H., Oldak M., Ploski R.
49. Distinct clinical and radiological phenotype associated with POU3F4 mutations
Oldak M., Pollak A., Lechowicz U., Kędra A., Stawiński P., Rydzanicz M., Mrówka M., Furmanek M., Skarżyński H., Płoski R.
50. Next Generation Sequencing in diagnostics of nonsyndromic hearing loss
Niepokój K., Grabarczyk A., Sota J., Śniegórska D., Kujko A., Wertheim-Tysarowska K., Gambin T., Obersztyn E., Kutkowska‑Kazimierczak A., Castańeda J., Własienko P., Bezniakow N.,
Barczyk A., Jurczak P., Jakubiak A., Śmigiel R., Sorbaj-Sucharska G., Bal J.
51. Preparing the amplicon NGS libraries for pharmacogenetic studies of patients with Crohn disease treated anti-TNF drugs
Walczak M., Skrzypczak-Zielinska M., Lykowska-Szuber L., Zakerska-Banaszak O., Eder P., Slomski R.
52. Validation of method for miRNA determination in serum
Słoka N.K., Kolackov K., Bolanowski M., Łaczmański Ł.
53. Next generation sequencing using molecular inversion probes: targeting genes potentially involved in retinal diseases.
Tracewska (Siemiatkowska) A.M., Khan M.I., Gilissen Ch., van de Vorst M., Henkes A., Steehouwer M., Zonneveld-Vrieling M.N., Hoischen A., Cremers-Frans P.M.
54. Pharmacogenetic studies of propofol using HPLC and long-range PCR based next generation sequencing.
Zakerska-Banaszak O., Skrzypczak-Zielinska M., Tamowicz B., Mikstacki A., Prendecki M., Dorszewska J., Pollak A., Molinska-Glura M., Slomski R.,
55. CNVs detection algorithm as a useful diagnostic tool in targeted NGS analysis
Sota J., Gambin T., Niepokój K., Charzewska A., Kutkowska-Kaźmierczak A., Jakubiuk-Tomaszuk A., Grabarczyk A., Sobecka K., Wiśniowiecka-Kowalnik B., Kędzior M., Gos M.
56. Genetic variants associated with early mortality in adults from polish population- preliminary results
Sobczyk-Kopcioł A., Rydzanicz M., Samoćko J., Piotrowski W., Pollak A., Drygas W., Stawiński P.,, Jerzy P., Płoski R.
57. Exploratory data analysis of a clinical study group – revealing patient subgroups.
Konopka B.M., Lwow F., Łaczmański Ł.
58. The influence of chromosome position on human gene evolution
Mackiewicz D.
59. Luigi pipelines – do not reinvent the wheel, keep more time for real science
Marciniak B., Strapagiel D.
60. Molecular diagnosis of neurofibromatosis type I. The application of Sanger sequencing and MLPA test.
Abramowicz A., Gos M., Kutkowska-Kazmierczak A., Obersztyn E., Klapecki J., Karwacki M., Bal J.
61. Over-expression of torsin 1A does not inhibit the pathogenic aggregation of mutant proteins.
Jurek M., Milewski M.
62. ATM gene alterations in Polish patients with ataxia-telangiectasia
Podralska M., Stembalska A., Ślęzak R., Śmigiel R., Lewandowicz-Uszyńska A., Pietrucha B., Kołtan S., Wigowska-Sowińska J., Pilch J., Mosor M., Ziółkowska-Suchanek I., Dzikiewicz-
Krawczyk A., Słomski R.
63. Role of copy number variants (CNVs ) in etiopathogenesis of epilepsy
Bartnik M.I., Szczepanik E., Wiśniowiecka-Kowalnik B., Ziemkiewicz K., Kędzior M., Gos M., Hoffman-Zacharska D., Mazurczak T., Jeziorek A., Antczak-Marach D., Rudzka-Dybała M.,
Mazurkiewicz H., Goszczańska-Ciuchta A., Zalewska-Miszkurka Z., Terczyńska I., Mierzewska H., Obersztyn E., Bocian E., Stankiewicz P.
64. MLPA test in children with familial form of mental retardation of unknown etiology
Lisik M.Z., Gutmajster E.
65. Errors during recombination process as a cause of pathogenic deletions in patients with ID
Plaskota I., Sobecka K., Wiśniowiecka-Kowalnik B., Kutkowska-Kaźmierczak A., Obersztyn E., Nowakowska B.
66. SETD5 Loss-of-Function Mutation as a Likely Cause of a Familial Syndromic Intellectual Disability with Variable Phenotypic Expression
Szczałuba K., Brzezinska M., Kot J., Rydzanicz M., Walczak A., Stawiński P., Werner B., Płoski R.
67. Novel and known X chromosome variants responsible for intellectual disability – analysis of a cohort of Polish families with XLID
Rzońca S.O., Gos M., Landowska A., Charzewska A., Kutkowska A., Castañeda J., Janeczko M., Posmyk R., Wierzba J., Stawiński P., Rydzanicz M., Kosińska J., Poznański J., Dawidziuk M.,
Antoniuk J., Obersztyn E., Płoski R., Bal J.
68. Porencephaly type 1- rare collagenopathy mimicking neuronal migration disorder.
Badura-Stronka M., Steinborn B., Monies-Nowicka A., Nowicki M.M., Piechota M., Wicher K., Latos-Bieleńska A., Monies D.
69. Novel mutation in MED12 identified by chromosome X exome sequencing in a Polish family with intellectual disability
Charzewska A., Nawara M., Chilarska T., Kalscheuer V., Gos M., Bal J., Hoffman-Zacharska D.
LODZ • September 19-22, 2016 POSTERS – HUMAN GENETICS G
70. Association of Taq-I polymorphism in vitamin D receptor gene with autism in children
Pruszyńska A., Cieślińska A., Fiedorowicz E., Huub F.J.S., Kostyra E.
71. Multiplex Ligation-dependent Probe Amplification as a screening test in children with autism
Łaczmańska I., Kozłowska J., Warzecha M., Stembalska A., Pesz K., Ślęzak R., Śmigiel R., Jakubiak A., Sąsiadek M.M.
72. Usefulness of oligonucleotide array CGH in clinical diagnostics of autism spectrum disorders.
Wiśniowiecka-Kowalnik B.J., Bartnik M.I., Nowakowska B.A., Obersztyn E., Kutkowska-Kaźmierczak A., Castañeda J., Bocian E., Stankiewicz P.
73. A novel missense mutation in FGFR1 causes Hartsfield syndrome.
Piotrowicz M., Sowińska-Seidler A., Jakubowski L., Jamsheer A.,
74. Connective tissue metabolism disorders – a polish family with a rare X-linked mutation in FGF16 gene.
Sałacińska K., Gach A., Pinkier I., Jamsheer A., Biegański T., Jakubowski L.
75. Interstitial deletion of chromosome 7 short arm, including TWIST1, GLI3 and HOXA gene – preliminary report.
Jułga K., Łazarczyk E., Haus O.
76. Mutation in exon 7 of the TCOF1 gene in the patient with Treacher Collins syndrome
Marszałek-Kruk B.A., Tomera R., Śmigiel R.
77. Genetic diagnosis of congenital adrenal hypoplasia (AHC) – MLPA as first-choice method
Straburzyński M., Muszyński J., Wujak N., Hertel A., Zajączek S., Stojewska M., Geisler G., Sorbaj-Sucharska G., Łacna K., Latos Bieleńska A.
78. Isobolographic analysis for in vitro combinations of genistein, kaempferol and biochanin A as therapeutic agents for
mucopolysaccharidosis
Węsierska M., Kloska A., Gabig-Cimińska M., Jakóbkiewicz-Banecka J., Malinowska M.
79. Gene expression profiling of Niemann-Pick type C fibroblasts: preliminary results of a pilot study.
Hetmańczyk K., Iwanicka-Nowicka R.,, Fogtman A., Koblowska M.,, Filocamo M., Lualdi S., Żyżyńska-Granica B., Włodarski P., Płoski R., Ługowska A.
80. Yeast as a system for modeling mitochondrial ATP synthase based diseases-mechanism and therapies
Kucharczyk R., Kabala A., Niedzwiecka K., Dautant A., di Rago J.-P.
81. Next Generation Sequencing for the analysis of mtDNA variation
Piotrowska A., Kosior-Jarecka E., Żarnowski T., Kierdaszuk B., Sobczyk-Kopcioł A., Kostera-Pruszczyk A., Kamińska A., Płoski R., Bartnik E.,, Tońska K.
82. Mitochondrial diseases caused by mitochondrial genome instability
Kaliszewska M., Kierdaszuk B., Piotrowska A., Rusecka J., Piotrowska A., Drozd M., Paulouskaya V., Piekutowska-Abramczuk D., Pronicka E., Kamińska A., Bartnik E., Tońska K.
83. Molecular variants in mitochondrial aminoacyl-tRNA synthetase genes and their phenotypic expression
Ciara E., Piekutowska-Abramczuk D., Jurkiewicz E., Bekiesińska-Figatowska M., Mierzewska H., Rokicki D., Szymańska E., Trubicka J., Halat P., Pelc M., Jurkiewicz D., Kowalski P.,
Siestrzykowska D., Pronicki M., Krajewska-Walasek M., Płoski R., Pronicka E.
84. Polish patients suspected of pyruvate dehydrogenase complex deficiency: diagnostic value of next generation sequencing
Halat P., Rokicki D., Ciara E., Piekutowska-Abramczuk D., Karkucińska-Więckowska A., Mayr J., Trubicka J., Szymańska-Dębińska T., Pelc M., Jurkiewicz D., Siestrzykowska D., Kowalski P.,
Pronicki M., Krajewska-Walasek M., Sperl W., Płoski R., Pronicka E.,
85. Mitochondrial DNA in common diseases associated with lifestyle: diabetes, obesity and atherosclerosis
Piotrowska A., Sobczyk-Kopcioł A., Kurkierewicz B., Schab A., Drygas W., Płoski R., Bartnik E.,, Tońska K.
86. Novel mutation in a patient with Cornelia de Lange Syndrome
Krawczyńska N., Kuźniacka A., Limon J., Wierzba J., Wasąg B.
87. Detection of 16p12.2 microdeletion in a patient with progeroid features
Litwińska Z., Pietrzyk A.,, Studniak E., Rychter M., Bonda W., Zajączek S.,
88. Clinical features of a patient with hypohidrotic ectodermal dysplasia.
Wieczorek-Cichecka N., Cywińska-Bernaś A., Piotrowicz M., Gach A., Chilarska T., Jakubowski L.
89. Ring chromosome 18 syndrome in a 4-year-old boy with complex congenital heart defect: a case report.
Bonda W., Litwińska Z., Pietrzyk A.,, Studniak E., Dołęgowska B., Zajączek S.,
90. Quality of life of children with isolated or syndromic esophageal atresia
Rozensztrauch A., Śmigiel R.
91. Minor malformations in neonates
Dobrzyńska E., Pyrkosz A., Staszek U., Piotrowska M., Wojakiewicz-Wysocka P., Zdebel C., Grygierczyk K.
92. Tissue-specific mosaic of 77 Mb 13q deletion in the patient with mild intellectual disability and skin lesions
Ziemkiewicz K., Jakubów-Durska K., Bartnik M., Smyk M., Kutkowska-Kaźmierczak A., Nowakowska B.
93. Helsmoortel–Van der Aa syndrome associated with a novel mutation in ADNP gene and additional clinical features
Jurkiewicz D., Ciara E., Piekutowska-Abramczuk D., Kucharczyk M., Jezela-Stanek Al., Chrzanowska K.H., Krajewska-Walasek M.
94. Identification of a novel mutation in EVC gene in a family with Ellis van Creveld syndrome.
Pietrusiński M., Budzyńska E., Moczulska H., Biegański T., Kałużewski B., Borowiec M.
95. Silver Russell Syndrome and Children Born Small for Gestational Age (SGA) – the difference between birth parameters.
Świąder-Leśniak A., Kołodziejczyk H., Kalina M., Marczak-Hałupka A., Tańska A., Jurkiewicz D., Chrzanowska K.
96. Severe, paroxysmal, familial myoglobinuria caused by mutation in LPIN1 gene. Whether must be lethal?
Pilch J., Sobczyńska-Tomaszewska A., Czerska K., Kajor M., de Lonlay P.
97. Detection of GPC3 gene mutation and deletion in three cases of Simpson-Golabi-Behmel syndrome.
Pietrzyk E., Litwińska Z., Pietrzyk A., Chojnacka H., Studniak E., Sobczyńska-Tomaszewska A., Zajączek S.
98. Retrospective identification of family of high-risk of having a baby with Smith-Lemli-Optiz syndrome
Ałaszewski W., Kozłowska M., Janiak K., Ciara E., Czichos E.
99. A spectrum of mutations in RIT1 gene in patients with Noonan syndrome clinical suspicion.
Landowska A., Gos M., Abramowicz A., Rzońca S., Wierzba J., Bezniakow N., Piotrowicz M., Posmyk R., Klapecki J., Obersztyn E., Bal J.
100. Sequence variants in mtDNA and mitochondrial transcripts in keratoconus Polish patients
Nowak D.M., Karolak J.A., Kubicka M.M., Kulińska K., Swierkowska J., Kabza M., Polakowski P., Rydzanicz M., Ploski R., Szaflik J.P., Gajecka M.
101. Comprehensive approach to understand causes of keratoconus
Gajęcka M., Karolak J.A., Kabza M., Rydzanicz M., Ginter-Matuszewska B., Nowak D.M., Polakowski P., Szaflik J.P.
102. Downregulation of core elements of TGF-β, Hippo, Wnt, and collagen synthesis pathways in keratoconus corneas
Karolak J.A., Kabza M.,, Rydzanicz M., Szcześniak M.W., Nowak D.M., Ginter-Matuszewska B., Polakowski P., Ploski R., Szaflik J.P., Gajęcka M.
103. The first case of autosomal recessive cone-rod dystrophy caused by a novel pathogenic mutation in the ATF6 gene
Skorczyk-Werner A., Wawrocka A.*, Wicher K.*, Chiang W.C.., Lin J.H., Jarmuz-Szymczak M., Kostrzewska-Poczekaj M., Jamsheer A., Ploski R., Rydzanicz M., Kohl S., Weisschuh N.,
Wissinger B., Krawczynski M.R.
* These authors contributed equally to this work.
104. Klinefelter Syndrome – does it qualify for assisted reproduction?
Wolski J.K., Kapuściński G., Kozioł K., Strzałkowska A., Ignaszak M., Lewandowski J., Wyban R., Izdebska-Książek M., Radziewicz‑Pigiel M., Stachowiak E., Gawron K., Klimczewska K.,
Kubiak K., Leśniewska K., Trubacz S., Marszał H., Ligaj M., Starczewski D., Biarda B., Lewandowski P.
LODZ • September 19-22, 2016 POSTERS – HUMAN GENETICS G
105. Frequency of chromosomal aberrations in patients with reproductive failures
Bernatowicz K., Zajączek S., Piotrowski K., Gronwald J.
106. Disorder of sex development in 7-years old girl with karyotype 46,XY.
Lisik M.Z., Gutmajster E.
107. A case of Klinefelter syndrome carrying an X-chromosome deletion inherited from the mother
Nedoszytko B., Ochman K., Kozak Klonowska B., Czernikiewicz A., Pastuszek E., Łaczmańska I., Łukaszuk K.
108. Male infertility caused by mosaic karyotype with different Y chromosome status in fibroblasts and lymphocytes.
Łazarczyk E., Pasińska M, Haus O.
109. New symptom of Jalili syndrome confirmed by a novel CNNM4 gene mutation in Polish patients.
Wawrocka A., Walczak-Sztulpa J., Kopczyński P., Mrukwa-Kominek E., Skorczyk-Werner A., Krawczyński M.R.,
110. Fractures In the course of X-linked spinal muscular atrophy (SMAX2)
Jędrzejowska M., Jakubowska-Pietkiewicz E., Kostera-Pruszczyk A.
111. Assessment of nutritional status in patients with Duchenne muscular dystrophy
Wernio E., Małgorzewicz S., Wierzba J., Kowalska A.
112. Zmienność fenotypu dyschondrosteozy Leri-Weill’a na przykładzie przypadku rodzinnego.
Chilarska T.¹, Ulańska A.¹, Pinkier I.¹, Biegański T.²
113. A 10q24.32 duplication causes femoral hypoplasia through formation of a novel topologically associated domain.
Socha M., Sowińska-Seidler A., Mundlos S., Latos-Bieleńska A., Spielmann M., Jamsheer A.,
114. An emerging role of next generation sequencing technologies in molecular diagnosis of prenatal skeletal dysplasias
Olech E.M., Zemojtel T., Sowinska-Seidler A., Socha M., Robinson P.N., Mundlos S., Latos-Bieleńska A., Jamsheer A.
115. Panel-based NGS identifies novel compound heterozygous variants of BMP1 underlying osteogenesis imperfecta
Gach A., Pinkier I., Jamsheer A., Salachna D., Antosik K., Jakubowski L.
116. Recurrent fractures in two children with LRP5 mutation
Rusińska A., Borowiec M., Młynarski W., Antosik K., Michałus I., Chlebna-Sokół D.
117. Evaluation of the quality of mRNAs encoding procollagen type I in patients with osteogenesis imperfecta
Auguściak-Duma A., Ludyga T., Witecka J.
118. Analysis of the TNFSF11 gene variants in Polish postmenopausal women with osteoporosis
Marszalek D., Wawrzyniak A., Skrzypczak-Zielinska M., Zakerska-Banaszak O., Walczak M., Slomski R.,
119. Alpha-1 antitrypsin variants in a group of 3068 Polish patients with chronic respiratory disorders
Duk K., Zdral A., Szumna B., Roży A., Chorostowska-Wynimko J.
120. Interleukin 1β polymotphism and haplotype but not serum level is associated with astma In children
Szczepankiewicz A., Sobkowiak P., Kowalewska M., Narożna B., Wojsyk-Banaszak I.,Kycler Z., Bręborowicz A.
121. The common G60G variant (c.180C>T) of CTRC is associated with idiopathic chronic pancreatitis (ICP) in children.
Grabarczyk A., Oracz G., Wertheim-Tysarowska K., Kujko A., Kołodziejczyk E., Bal J., Kozieł D., Kowalik A., Głuszek S., Rygiel A.M.
122. The incidence of polymorphism in exon I of the gene encoding somatostatin in patients with late-onset Alzheimer’s disease.
Gajda E.L., Bratosiewicz-Wąsik J.
123. The prevalence of FTO gene polymorphisms in Alzheimer’s disease patients
Kolačkov K., Słoka N.K., Bolanowski M., Łaczmański Ł.
124. Ocena wpływu SNP genów oksytocyny i wazopresyny na skuteczność treningu społecznego poznania i neuropoznania u osób z JP.
Zimowski J.G., Kułakowska D., Starzomska M., Wilkos E., Kucharska K.
125. The Val66Met polymorphism of the brain derived neurotrophic factor (BDNF) gene in Polish subjects with the morbid obesity.
Pacholczyk M., Ferenc T., Kowalski J., Adamczyk P., Chojnowski J., Ponikowska I.,
126. Possible association of ABCB1:c.3435T>C polymorphism with high-density-lipoprotein-cholesterol response to statin treatment – from
pilot to full study.
Sałacka A., Bińczak-Kuleta A., Kaczmarczyk M.,Hornowska I., Safranow K., van de Wettering T., Clark J.S.C. *
127. The CETP gene rs708272 polymorphism association with plasma total cholesterol concentrations
Iwanicki T., Iwanicka J., Niemiec P., Nowak T., Trautsolt W., Grzeszczak W., Ochalska- Tyka A., Krauze J. Żak I.
128. Marked hipertrigliceridemia as a biochemical hallmark of familial partial lipodystrophy.
Kubera L., Gach A., Pinkier I., Zygmunt A., Karbownik-Lewińska M., Sośnierz E, Bieniek E, Lewiński A., Jakubowski L.
129. The TERT promoter polymorphisms and RTL in elderly Polish population of obese people: PolSenior substudy.
Gutmajster E., Chudek J., Augusciak-Duma A., Szwed M., Owczarz M., Mossakowska M., Puzianowska-Kuznicka M., Zejda J., Wiecek A., Sieron A.L.
130. Correlation analysis of selected polymorphisms of the gene FTO with anthropometric and biochemical parameters in obese patients
Ślęzak R., Leszczyński P., Warzecha M., Łaczmański Ł., Misiak B.
131. Association of PON1 L55M polymorphism with coronary artery disease
Iwanicka J., Iwanicki T., Balczerzyk A., Górczyńska-Kosiorz S., Grzeszczak W., Ochalska- Tyka A., Krauze J., Żak I.
132. Haplotype analysis of the CYBA gene in the pathogenesis of coronary artery disease
Nowak T., Niemiec P.ł., Balcerzyk A., Krauze J., Ochalska-Tyka A., Żak I.
133. Mutations of the BRCA1 and BRCA2 genes identified by next-generation sequencing in Western Ukrainian patients with breast and
ovarian cancers.
Myszka A., Akopyan H.,, Kitsera N., Siekierzyńska A., Hammet F., Tsimiklis H., Park D.J., Nguyen-Dumont T., Southey M.M.
134. Assessment of chromosome aberrations in pregnant women with gestational diabetes mellitus and in their newborns.
Witczak M., Wilczyński J., Gulczyńska E., Talar T., Mordalska A., Łopaczyńska D., Ferenc T.
135. Analysis of antioxidative potential of recombinant proteins immobilized on nanoparticles. Study in vitro, and in vivo
Pudlasz A., Soliwoda K., Sakowicz T., Kowalczyk T., Celichowski G., Grobelny J., Szemraj J.
136. Downregulation of ETS-family of transcription factors may contribute to the loss of B-cell phenotype of HRS cells in cHL
Zemke N., Bodnar M., Domanowska E., Martin-Subero J.-I., Ammerpohl O., Klapper W., Marszalek A., Siebert R., Giefing M.
137. Cell cycle re-initiation sensitizes quiescent cells to oxidative stress
Tokarz P., Piastowska-Ciesielska A.W., Błasiak J.
138. Development medical module software for biobank.
Tobor W., Łaczmański Ł.,
139. Whole Genome Sequencing of successfully aging long-lived Polish Caucasians and creation of a reference database 236
Boguszewska-Chachulska A., Matczyńska E., Łyszkiewicz P., Krawczyk M., Kowalczyk D., Winiarski D., Mossakowska M., Puzianowska-Kuźnicka M., Zagulski M.
140. A new approach to the identification of human populations.
Daca-Roszak P., Sabała I., Wierzchosławski R., Pfeifer A., Żebracka-Gala J., Jarząb B., Witt M., Ziętkiewicz E.
LODZ • September 19-22, 2016 POSTERS – HUMAN GENETICS G
141. The project NEXT – implementing the potential of massively parallel sequencing in forensic predictive DNA analysis.
Kukla M., Spólnicka M., Pośpiech E., , Zubańska M., Grzybowski T., Płoski R., Zbieć-Piekarska R., Branicki W.
142. Influence of storage conditions and DNA isolation method on quality of isolates obtained from human biological traces
Adamska M., Ficek M., Andzel A.
143. New TP53 gene mutation in patient with chronic lymphocytic leukemia – case report
Popek S., Michalak-Wojnowska M., Koczkodaj D., Wąsik-Szczepanek E., Filip A.A.
144. Germline polymorphisms associated with minimal residual disease (MRD) in pediatric acute lymphoblastic leukemia (ALL)
Dawidowska M., Kosmalska M., Sędek Ł., Szczepankiewicz A., Twardoch M., Sonsala A., Szarzyńska-Zawadzka B., Derwich K., Lejman M., Pawelec K., Obitko-Płudowska A.a, Pawińska-
Wąsikowska K., Kwiecińska K., Kołtan A., Dyla A.b, Grzeszczak W., Kowalczyk J.R., Szczepański T., Ziętkiewicz E., Witt M.
145. Methylenetetrahydrofolate reductase C677T and A1298C polymorphisms and risk of acute lymphoblastic leukemia in children
Kałużna E., Strauss E., Zając-Spychała O., Świątek-Kościelna B., Gowin E., Fichna M., Januszkiewicz-Lewandowska D.
146. Prognostic significance of IDH1/2 mutations in NK-AML patients depends on NPM1/FLT3 mutational status and induction regimen
Libura M, Giebel S., Piatkowska-Jakubas B., Pawelczyk M., Florek I., Matiakowska K., Jazwiec B., Borg K., Solarska I., Zawada M., Czekalska S., Salamanczuk Z., Jakóbczyk M., Karabin K.,
Paluszewska M., Calbecka M., Gajkowska-Kulik J., Semenczuk G., Kielbinski M., Ejduk A., Kata D., Grosicki S., Wierzbowska A., Robak T., Kyrcz-Krzemien S., Juszczyński P., Warzocha K.,
Kuliczkowski K., Skotnicki A., Jedrzejczak W.W., Holowiecki J., Haus O.
147. Additional copies of chromosome 21 and amplification of AML1 gene in adults acute leukemias.
Skonieczka K., Grolik B., Chrzanowska N., Mucha B., Haus O.
148. The congenital CHK2 mutations are a risk factor of ET, PV and MDS myeloid malignant diseases, but not AML.
Janiszewska H., Bąk A., Skonieczka K., Jaśkowiec A., Całbecka M., Kiełbiński M., Jachalska A., Jaźwiec B., Kuliszkiewicz-Janus M., Czyżewska M., Kuliczkowski K., Haus O.,
149. Array-based genomic and transcriptomic profiling in search of genes resposible for in vitro drug resistance
Szczepanek J., Domagalski K., Laskowska J., Pogorzała M., Styczyński J., Tretyn A.
150. Comparison of different kits for HLA genotyping with the use of sequence-based typing (SBT) methods
Wróblewska-Kabba S., Bogacz A., Gronkowski M., Sowiński M., Kolasiński M.
151. Severe, paroxysmal, familial myoglobinuria caused by mutation in LPIN1 gene. Whether must be lethal?
Pilch J., Sobczyńska-Tomaszewska A., Czerska K., Kajor M., de Lonlay P.
152. Acute lymphoblastic leukemia with a complex karyotype suspected in a 64-year-old male: a case report.
Studniak E., Litwińska Z., Pietrzyk A., Dołęgowska B., Homa K., Zdziarska B.
153. Recurrent DNA methylation of FAM107A gene in laryngeal tumors
Kiwerska K., Szaumkessel M., Paczkowska J., Kostrzewska-Poczekaj M., Kalinowicz E., Jarmuż-Szymczak M., Szyfter K.F., Wierzbicka M., Grenman R., Giefing M.
154. A rare case of chronic myeloid leukemia with transcript e19a2
Ratajczak B., Przybyłowicz-Chalecka A., Czerwińska-Rybak J., Kopydłowska-Lehmann A., Iwoła M., Kolanowska A., Lewandowski K., Komarnicki M., Jarmuż-Szymczak M.
155. KMT2A and MYC amplification in patients with acute myeloid leukemia
Przybyłowicz-Chalecka A., Ratajczak B., Czerwińska-Rybak J.1, Kolanowska A.1, Komarnicki M.1, Jarmuż-Szymczak M.1, 2
156. Markers of resistance to anthracyclines in childhood acute leukemias
Laskowska J., Szczepanek J., Tretyn A.,, Styczyński J.
157. Correlation between TP53 codon 72 polymorphisms and proapoptotic function of bortezomib in multiple myeloma patients without
NOTCH1 mutations under in vitro conditions.
Zmorzyński S., Korszeń-Pilecka I., Wojcierowska-Litwin M., Kwiatkowska-Drabik B., Luterek M., Chocholska S., Michalak-Wojnowska M., Koczkodaj D.,Tomczak W., Świderska-Kołacz G.,
Januszewska J., Surowiec I., Hus M., Dmoszyńska A., Pasiarski M., Poniewierska-Jasak K., Ciepińska K., Jagielska E., Filip A.
158. Mixed Chimerism hasn’t Impact on Survival in Children with Severe Aplastic Anemia post Stem Cell Transplantation.
Lejman M., Drabko K., Winnicka D., Babicz M., Styka B., Jaszczuk I., Wojciechowska K., Holweg M., Kowalczyk J.R.
159. Wprowadzenie badań cytogenetycznych oraz FISH w praktykę laboratoryjną u pacjentów ze szpiczakiem mnogim: pierwsze
doświadczenie ośrodka Lwowskiego.
Vanko I., Lukianowa A., Tsiapka O., Leshchuk O., Karol Y., Maslyak Z., Rygier J., Pieńkowska-Grela B.
160. Is H3F3A mutation detection useful in the diagnosis of giant cell tumor of bone (GCT)?
Tysarowski A., Wągrodzki M., Seliga K.A., Rutkowski P., Prochorec-Sobieszek M. , Siedlecki J.A.
161. Recurrent CEACAM6, CLCA4 and FUT3 downregulation in laryngeal squamous cell carcinoma
Jarmuż-Szymczak M., Bednarek K., Szaumkessel M., Kostrzewska-Poczekaj M., Janiszewska J., Kiwerska K., Paczkowska J., Bartochowska A., Grenman R., Zydroń R., Wierzbicka M.,
Szyfter K.f., Giefing M.
162. SNPs of the ERAP1 gene: are they associated with non-small cell lung cancer in Poles or Chinese?
Yao Y.*, Wiśniewski A.*, Ma Q., Kowal A., Porębska I., Pawełczyk K., Yu J., Dubis J., Żuk N., Li Y., Shi L., Kuśnierczyk P.
*These two authors contributed equally to this work.
163. Zastosowanie fluorescencyjnej hybrydyzacji in situ na skrawkach parafinowych do oceny amplifikacji MYCN u pacjentów ze zwojakiem
zarodkowym współczulnym
Winnicka D., Lejman M., Babicz M., Styka B., Jaszczuk I., Wojciechowska K., Holweg M., Kowalczyk J.R.
164. Expression and methylation levels of three tumor suppressor genes, DLEC1, ITGA9 and MLH1, in non-small cell lung cancer
Pastuszak-Lewandoska D., Kordiak J., Antczak A., Migdalska-Sęk M.,Czarnecka K.H., Górski P., Nawrot E., Kiszałkiewicz J.M., Domańska‑Senderowska D., Brzeziańska-Lasota E.
165. Is EGFR mutations detection in circulating tumor DNA reliable method for diagnostics and therapy response monitoring ?
Tysarowski A., Seliga K.A., Winiarczyk K., Knetki-Wróblewska M., Kowalski D., Siedlecki J.A.
166. Polymorphisms within the ECRR1 gene contribute to the susceptibility to non-small cell lung cancer in Polish population
Chaszczewska-Markowska M., Kosacka M., Korzeniewska A., Dyła T., Brzecka A., Bogunia-Kubik K.
167. The relationship analysis of PRDM2 and TCF21 promoter methylation level and gene expression in lung carcinogenesis
Czarnecka K.H., Kordiak J., Pastuszak-Lewandoska D., Wilkus K., Migdalska-Sęk M., Domańska D., Kiszałkiewicz J., Antczak A., Brzeziańska‑Lasota E.
168. Genetic Analyses of Early-Onset Gastric Cancer.
Kapusta P.*, Machlowska J.*, Bogdali A.,Radkowski P., Morsink F., Polkowski W., Offerhaus J., Wołkow P., Maciejewski R., Robert S., ,
169. Genetic variants and treatment response in breast cancer patients
Tęcza K., Pamuła-Piłat J., Łanuszewska J., Butkiewicz D., Grzybowska E.
170. Frequency of CHEK2 selected mutations in patients with different cancers
Mitura J., Szczypińska O., Kwiatkowska E., Janiec-Jankowska A., Nowakowska D.
171. Screening for the most common mutations of BRCA1, BRCA2, CHEK3 and NBN genes.
Kwiatkowska E., Janiec-Jankowska A., Szczypińska O., Mitura J., Nowakowska D.
172. Disturbed expression of core circadian genes in breast cancer.
Przybek M.,Jabłońska E., Wieczorek E., Kalinowski L., , Skokowski J.,, Seroczyńska B., Wąsowicz W., Reszka E.
173. Rapid detection method for the 4 most common CHEK2 mutations based on melting profile analysis.
Borun P., Salanowski K., Godlewski D., Walkowiak J., Plawski A.
LODZ • September 19-22, 2016 POSTERS – HUMAN GENETICS G
174. Bioinformatical analysis as a supplementary tool to assess the character of novel mutations in BRCA1 and BRCA2 genes
Białek-Prościńska A., Koczyk G., Badziąg-Leśniak N., Stawicka-Niełacna M., Muszyński J., Przyborska M., Łacna K., Latos-Bieleńska A.
175. Searching for new mutations of BRCA1 gene in patients from HBCs (Hereditary Breast Cancer syndrome) families
Bąk A., Heise M., Haus O.
176. Analysis of the variability of the UBC9 gene coding E2 enzyme in SUMO cycle in women with breast cancer
Bialik P., Kucińska A., Słomka M., Korycka-Machała M., Strapagiel D., Woźniak K.
177. Prevalence of BRCA1 selected mutations in patients with breast and/or ovarian cancer
Szczypińska O., Janiec-Jankowska A., Kwiatkowska E., Mitura J., Nowakowska D.
178. Ovarian cancer in a family with coexistence of germline NF1 and BRCA1 mutations. A case report
Kuźniacka A., Ratajska M., Brożek I., Koczkowska M., Krygier M., Dębniak J., Biernat W., Wasąg B., Limon J.
179. Detection method for the 3’EPCAM genomic deletion and its frequency in Polish HNPCC patients
Borun P., Szczepinska J., Siolek M., Kozak-Klonowska B., Plawski A.
180. Expression levels of microRNA genes in HCC patients
Jablkowski M., Bialkowska J., Szemraj J.
181. The study of lgals1 & lgals3 gene promoters methylation and expression profiles in the tov-21g ovarian cancer cell line.
Bieg D., Nowak E., Poczęta M., Mielczarek-Palacz A., Kondera-Anasz Z., Bednarek I.
182. The analysis of clinical significance of the EMSY gene polymorphism, rs11236775, in ovarian cancers
Dansonka-Mieszkowska A., Moes-Sosnowska J., Szafron Ł.M., Budziłowska A., Łukasik M., Konopka B., Kulesza M., Pieńkowska-Grela B., Zub R., Kupryjańczyk J.
183. The influence of DNMTi on the CDH1 activity in ovarian cancer cells
Nowak E., Poczęta M., Bieg D., Loch T., Gałka S., Sikora J., Kondera-Anasz Z., Bednarek I.
184. The significance of c.690G>T polymorphism (rs34529039) and expression of the CEBPA gene in ovarian cancer outcome.
Konopka B.†, Szafron L.M.†, Kwiatkowska E., Podgorska A., Zolocinska A., Pienkowska-Grela B., Dansonka-Mieszkowska A., Balcerak A., Lukasik M., Stachurska A., , Timorek A.,
Spiewankiewicz B., El-Bahrawy M., Kupryjanczyk J.
185. PIK3R1 copy number variation analysis in ovarian cancer.
Rzepecka I.K, Konopka B., Podgórska A., Doerr J., Wachol K., Pieńkowska-Grela B., Kupryjańczyk J.
186. Expression analysis of eight genes involved in the autophagy pathway in colorectal cancer
Gil J., Ramsey D., Szmida E., Pawłowski P., Leszczyński P., Bębenek M., Sąsiadek M.
187. Characteristic of DNA copy number alterations between genomes of primary colorectal cancer with liver metastasis and CRC
genomes without liver metastasis.
Żurawska J.L., Kowalczuk O., Kędra B.
188. MicroRNA expression in bladder cancer
Jabbar R., Nowicki J., Borkowska E., Borowiec M.
189. Differentially expressed long noncoding RNAS in bladder cancer
Borkowska E.M., Peter S., Dryton R., Rakhit C.P., Noon A.P., Chan Wei, Catto J.W.F.
190. A retrospective evaluation of 512 results of UroVysion test applications.
Morzuch L., Kałużewski T., Jędrzejczyk A., Marks P., Różniecki M., Kałużewski B.
191. Epigenetic regulation of STAT3 gene activity in cancer cell line T24 and bladder cancer
Poczęta M., Nowak E., Bieg D., Sołtysik D., Sypniewski D., Bednarek I.
192. Epigenetic mechanisms crucial for malignant transformation process in prostate cancer cell lines.
Kamińska K., Huang S., Lewandowska M.A.
193. Frequency analysis of CYP1B1 polymorphisms and haplotypes (C142G, G355T, C4326G) in prostate cancer men.
Heise M., Haus O.
194. Nanomaterials as genotoxic carcinogens – new players enter the game
Kapka-Skrzypczak L., Matysiak M., Kruszewski M.
195. Rapid detection of RET gene mutations in apparently sporadic MTC patients by Multiplex High Resolution Melting analysis.
Kaczmarek-Ryś M., Ziemnicka K., Pławski A., Hryhorowicz S., Budny B., Boruń P., Hoppe-Gołębiewska J., Słomski R.
196. Genetic status of multipotential cells in long-term culture conditions.
Murzyn M.,Semenova E., Bednarek M., Ołdak T., Kałużewski B.
197. Three-dimensional chromosomal conformation changes regulates ROD1 epression in cancer cell lines.
Kubiak M., Huang S., Lewandowska M.A.
198. Novel 1q22 duplication associated with complex craniosynostosis, muscular hypotonia and intellectual disability
Sowińska-Seidler A., Jamsheer A.
199. Analysis of NR3C1 gene in polish IBD patients undergoing glucocorticoids therapy
Skrzypczak-Zielińska M., Gabryel M., Komur A., Walczak M., Zakerska-Banaszak O., Marszalek D., Dobrowolska A., Szalata M., Slomski R.

PILNY KOMUNIKAT

Szanowni Państwo,
Uczestnicy V Polskiego Kongresu Genetyki,

informujemy, że dobiega końca proces kwalifikacji streszczeń i doniesień zgłoszonych na Kongres. Zdecydowana większość nadesłanych prac została pozytywnie zakwalifikowana do prezentacji podczas sesji plakatowych (z wyjątkiem sesji dotyczących genetyki drobnoustrojów, gdzie staraliśmy się dostosować do preferencji Uczestników, a zdarzyły się nawet przypadki zakwalifikowania zgłoszeń plakatowych do krótkich doniesień ustnych). Przy ogromnej liczbie nadesłanych streszczeń, nie mamy technicznych możliwości, by zawiadomić każdego z autorów indywidualnie o przyjęciu doniesienia. Przyjmujemy zatem zasadę, że bezpośredni kontakt zostanie nawiązany przede wszystkim z tymi autorami, których doniesień nie zakwalifikowano do prezentacji. W jakimś sensie brak wiadomości będzie zatem dobrą wiadomością, świadczącą o przyjęciu streszczenia. Podobnie jest z doniesieniami zgłaszanymi jako doniesienia ustne. W większości przypadków mogą one być prezentowane tylko w postaci plakatów jeśli nie nawiążemy w tej sprawie kontaktu. Autorzy, których doniesienia zostaną zakwalifikowane do prezentacji ustnych zostaną o tym powiadomieni.

W imieniu Komitetu Organizacyjnego
prof. dr hab. Andrzej K. Kononowicz


 

Szanowni Państwo,

w imieniu Komitetu Organizacyjnego V Polskiego Kongresu Genetyki informuję, że ostateczne decyzje dotyczące zakwalifikowania do prezentacji doniesień przez Państwa zgłaszanych zapadną nie prędzej niż 30 lipca 2016. Termin 15 lipca podany dotychczas na stronie Kongresu jest nie do utrzymania ze względu na ogromne nim zainteresowanie. Dotychczas na Kongres wpłynęła rekordowa ilość blisko 450 streszczeń. Przewidujemy, że łącznie ze streszczeniami nadsyłanymi przez zaproszonych wykładowców będzie ich ponad 500. Wykroczyło to poza nasze najśmielsze oczekiwania. Z jednej strony wpływa to na rangę Kongresu, z drugiej – stanowi określone wyzwanie organizacyjne. Prosimy zatem o cierpliwość. Naszą wolą jest jest dopuszczenie do prezentacji wszystkich doniesień. Recenzenci mają zwracać przede wszystkim uwagę na ewentualne błędy merytoryczne oraz nomenklaturowe, wymagające ewentualnej korekty w porozumieniu z autorami. Dopuszczenie części doniesień do ewentualnych prezentacji ustnych musi się odbyć w porozumieniu z przewodniczącymi sesji tematycznych, którzy muszą wówczas określić czas wystąpień gości zaproszonych. Generalnie jednak proszę się liczyć z dominacją doniesień w postaci plakatów.

Lucjusz Jakubowski
Wiceprzewodniczący Komitetu Organizacyjnego

Serdecznie zapraszamy Państwa do uczestnictwa w Kongresie, a także do zgłaszania streszczeń
prac oryginalnych i kazuistycznych
Państwa autorstwa.

Możliwe jest również zgłaszanie streszczeń wykładów lub doniesień
o charakterze poglądowym lub wnoszących istotny wkład do tematyki planowanych  Sesji, po zaakceptowaniu tego typu wystąpień
przez Komitet Naukowy Kongresu
 

Ostateczny termin przesyłania streszczeń upływa 30.06.2016 

„W związku z zapytaniami dotyczącymi regulaminu streszczeń informujemy, że każde zgłoszenie wystąpienia ustnego musi być jednoznaczne z przesłaniem streszczenia angielskojęzycznego tego wystąpienia. Dotyczy to również zapraszanych wykładowców.
 Streszczenia doniesień na sesje plakatowe mogą być polskojęzyczne, choć podobnie jak plakaty mile widziane będą w języku angielskim.
Wyjaśniamy, że celem takiej decyzji jest ułatwienie gościom zagranicznym udziału w sesjach prowadzonych w języku polskim. Z tego samego powodu przypominamy jednocześnie, że niezależnie od języka wykładowego prezentacja multimedialna każdego zapraszanego wykładowcy oraz uczestnika Kongresu zgłaszającego doniesienie ustne musi być przygotowana w języku angielskim (także na sesje prowadzone w języku polskim bez czynnego udziału gości zagranicznych). Podkreślamy również, że sesje z czynnym udziałem gości zagranicznych będą prowadzone w języku angielskim.” 

Komitet Organizacyjny Kongresu, działając w porozumieniu z Zarządami PTG i PTGC uznał,
że streszczenia wystąpień ustnych zgłoszonych i zakwalifikowanych do wygłoszenia podczas Sesji z udziałem gości zagranicznych będą akceptowane wyłącznie w języku angielskim.
Językiem wykładowym podczas takich Sesji będzie wyłącznie język angielski.
Dotyczy to także sporządzenia w języku angielskim prezentacji multimedialnych.

Również podczas Sesji polskojęzycznych, bez czynnego udziału wykładowców zagranicznych, językiem obowiązującym w prezentacjach multimedialnych jest język angielski, nawet w przypadkach wykładów wygłaszanych w języku polskim. Tytuł streszczeń przesyłanych w języku polskim ma być przetłumaczony na język angielski.

Umożliwi to gościom zagranicznym śledzenie choć w tym zakresie
treści interesujących ich wykładów i wystąpień.

Nawet w przypadkach wystąpień polskojęzycznych lub udziału w sesjach plakatowych
mile widziane będą streszczenia oraz plakaty angielskojęzyczne
z użyciem anglojęzycznej nazwy Kongresu jako:
„The 5th Polish Congress of Genetics, September 19-22, 2016, Lodz, Poland”

Zdaniem Organizatorów Kongresu oraz Zarządów obu Towarzystw powyższe decyzje mają stanowić zachętę do pełnego umiędzynarodowienia Polskich Kongresów Genetyki, począwszy od Kongresu szóstego, wzorem wielu innych tego typu spotkań środowisk naukowych, nawet w państwach sąsiadujących z Polską. Może to stanowić o szerszych możliwościach wymiany doświadczeń naukowych i zawodowych genetyków polskich z podobnymi środowiskami w Europie i na Świecie.

Uważamy, że nasze ośrodki naukowe mają do zaprezentowania coraz więcej wyników badań prowadzonych na wysokim poziomie merytorycznym oraz technologicznym, także przy współpracy międzynarodowej. We współczesnym świecie nauki nie powinno być bariery językowej utrudniającej wymianę poglądów i swobodne zgłaszanie się na nasze Kongresy naukowców z innych państw, poza gośćmi zaproszonymi. Kolejne pokolenia polskich naukowców także ze swobodą posługują się językiem angielskim. Prosimy zatem o przychylne przyjęcie inicjatywy Organizatorów obecnie przygotowywanego Kongresu.

Uwaga:

Streszczenia nie spełniające wymogów redakcyjnych nie będą brane pod uwagę

Tylko streszczenia przygotowane prawidłowo będą podlegać recenzowaniu
przez członków Komitetu Naukowego Kongresu.

W przypadkach recenzji negatywnej autor wskazany jako osoba do korespondencji będzie powiadomiony o tym fakcie, jednakże bez dodatkowego komentarza merytorycznego,
co byłoby niemożliwe ze względów organizacyjnych.

Organizatorzy nie ujawniają nazwisk recenzentów.

Decyzja o odrzuceniu streszczenia nie podlega odwołaniu.

Ogłoszenie decyzji o przyjęciu streszczeń i sposobie prezentacji doniesienia:
nie później niż do 15 lipca 2016

  1. Prosimy o przesyłanie streszczeń wyłącznie w formie elektronicznej, z wykorzystaniem formularza zgłoszeniowego przygotowanego w tym celu na stronie Kongresu.
  2. W formularzu tym należy zaznaczyć wybraną formę prezentacji:
    • prezentacja ustna (multimedialna) do wygłoszenia podczas wskazanej Sesji tematycznej
    • doniesienie w formie plakatu do przedstawienia podczas Sesji Plakatowej (zależnie od liczby zgłaszanych plakatów będą one prezentowane przez cały czas trwania Kongresu lub w wyznaczonych przedziałach czasowych, o czym poinformujemy w terminie późniejszym)
    • Uwaga: jeden autor może być współautorem wielu doniesień, ale może być osobą prezentującą tylko jedno doniesienie/plakat.
  3. Streszczenia powinny zostać przygotowane według poniższych wymagań:
    • Stosujemy czcionkę Times New Roman 10 pkt, z zachowaniem interlinii: 1. Symbole genów/wyników badań molekularnych powinny być zgodne z zasadami określonymi w bazie Human Gene Mutation; zapisy wyników badań przeprowadzonych przy użyciu technik cytogenetyki klasycznej i/lub cytogenetyki molekularnej powinny odpowiadać zasadom ISCN 2013.

Należy:

  • Podać nazwisko, pierwsze imię w pełnym brzmieniu oraz inicjały (jeśli niezbędne) kolejnych imion każdego autora
  • Pogrubioną czcionką zaznaczyć nazwisko autora prezentującego doniesienie ustne
    lub plakat podczas Sesji Plakatowych.
  • Oznaczyć afiliację (-e) z umieszczeniem po nazwisku każdego z autorów cyfry podanej w indeksie górnym odpowiadającej jednostce (instytutcji) wskazanej przez każdego z autorów jako miejsce powstania pracy lub jej części; możliwe jest wskazanie większej liczby jednostek w afiliacji autora przez podanie cyfr odpowiadających wykazowi jednostek, z oddzieleniem tych cyfr przecinkiem i spacją, np. Mazurowski1, 3
  • Wpisać nazwy instytucji, które uczestniczyły w przygotowaniu prezentowanej pracy, oznaczone przed tymi nazwami kolejnymi cyframi (od 1, 2, 3, itd), wykorzystanymi dla określenia afiliacji każdego z autorów, jak to omówiono w poprzednim podpunkcie; człony stosowane w nazwie instytucji należy podawać w mianowniku, w odpowiedniej hierarchii, z oddzieleniem ich przecinkiem oraz spacją, np. Zakład Genetyki (Pracownia, Laboratorium), Katedra Biotechnologii, Instytut Biochemii, Uniwersytet Przyrodniczy im. …………….. w Pucku);
  • w streszczeniach i prezentacjach angielskojęzycznych nazwy instytucji mają być podane w języku angielskim.
  • Podać tytuł doniesienia/prezentacji (nie więcej niż 120 znaków ze spacjami).
  • Podać angielskojęzyczny tytuł doniesienia/prezentacji w przypadku streszczeń w języku polskim.
  • Wpisać (przenieść) do formularza zgłoszeniowego treść streszczenia (nie więcej niż 1500 znaków ze spacjami, z uwzględnieniem spacji także po każdym znaku interpunkcyjnym; dotyczy to również streszczeń angielskojęzycznych; do liczby znaków w streszczeniu nie wlicza się tytułów, nazwisk autorów i ich afiliacji)
  • Nie jest wymagane nadawanie odrębnego podtytułu każdemu z elementów streszczenia, ale każde z nich, zwłaszcza w przypadkach prac oryginalnych oraz kazuistycznych, powinno zawierać w kolejnych akapitach: wstęp (krótki opis problemu i uzasadnienie przeprowadzenia badania), cel pracy (hipoteza, rozwiązanie problemu klinicznego, opracowanie metody, wdrożenie, diagnostyka), materiał i metody (założenia projektu, pochodzenie materiału, liczebność grupy i jej charakterystyka, stosowane metody i/lub interwencje, metody analizy i opracowań statystycznych), wyniki (najważniejsze dane), wnioski (powinny wynikać z przedstawionych danych i stanowić odpowiedź na sformułowane cele badania), poddane krótkiej dyskusji.

W doniesieniach o charakterze przeglądowym lub poglądowym poza opisem problemu oraz podaniem celu doniesienia należy podać kryteria kwalifikacji i/lub dyskwalifikacji wyników badań źródłowych, ich pochodzenie, sposób identyfikacji danych dotyczących prezentowanego tematu (bazy danych, przeglądy systematyczne, inne przeglądy literaturowe) oraz sposób syntezy danych.

  • W przypadkach finansowania pracy z projektów badawczych należy podać numer projektu (uwaga: nie podawać numeru umów) oraz instytucję finansującą projekt lub też strukturę organizacyjną zapewniającą finansowanie projektu. Objętość tych danych nie jest zaliczana do liczby znaków ograniczających objętość streszczenia.
  • Należy podać imię i nazwisko, jednostkę, adres z kodem pocztowym, telefon, fax, e-mail autora wskazanego do korespondencji z Komitetem Organizacyjnym Kongresu. Objętość tych danych również nie jest zaliczana do liczby znaków ograniczających objętość streszczenia.
  • Do streszczeń nie należy dołączać piśmiennictwa.
  • Struktura streszczenia może być inna, niż przedstawiono poniżej, jeśli wymaga tego charakter doniesienia kongresowego, ale powinno to być uzgodnione z odpowiednim wyprzedzeniem czasowym z Komitetem Organizacyjnym Kongresu

Streszczenia doniesień zakwalifikowanych do prezentacji ustnej lub w formie plakatu podczas Kongresu zostaną wydrukowane w materiałach Kongresu. Materiały te zostaną wydane w formacie A-4 przy założeniu umieszczenia na jednej stronie dwóch streszczeń.
Komitet Naukowy Kongresu zastrzega sobie prawo zakwalifikowania zgłoszenia wskazanego do prezentacji ustnej jako doniesienia w ramach sesji plakatowej i vice versa – doniesienia zgłaszanego jako plakatowe do prezentacji ustnej, ze względu na jego szczególny charakter lub wartość merytoryczną. Decyzje takie każdorazowo będą uzgadniane z autorem wskazanym do korespondencji.
Organizatorzy zastrzegają sobie prawo do dokonywania poprawek stylu i mianownictwa oraz koniecznych skrótów tekstu bez zgody autora, jeśli nie wpłynie to na wymowę merytoryczną streszczenia.
Lista zakwalifikowanych prac zostanie umieszczona na stronie internetowej Kongresu – www.kongresgenetyki2016.pl
Najlepsze doniesienia ustne i w formie plakatów będą oceniane przez Komisje wyłonione z grona Komitetu Naukowego Kongresu oraz Zarządów PTGC i PTG i typowane do nagród ufundowanych przez te Towarzystwa.
Charakter nagród i regulamin ich przyznawania zostanie określony w terminie późniejszym i podany na stronie Kongresu.

  • Forma prezentacji:
    • Wykłady podczas Sesji Plenarnej inaugurującej Kongres w dniu 19 września 2016 wygłoszone będą w języku angielskim, w czasie do 40 min.
    • Wykłady podczas Sesji Plenarnych na początku każdego dnia Kongresu wygłaszane przez zaproszonych wykładowców polskich i/lub zagranicznych będą wygłaszane również w języku angielskim, w czasie do 30 min.
    • Wykłady i doniesienia ustne podczas Sesji Tematycznych z udziałem gości zagranicznych będą wygłaszane w języku angielskim w czasie do 30 min w przypadkach wykładowców zaproszonych przez Komitet Organizacyjny Kongresu oraz w czasie do 15 min w przypadkach doniesień zakwalifikowanych przez Komitet Naukowy Kongresu do prezentacji ustnej.
    • Wykłady i doniesienia podczas Sesji Tematycznych bez udziału gości zagranicznych mogą być wygłaszane w języku polskim, przy zachowaniu przedziałów czasowych jak w poprzednim podpunkcie.
    • Wszystkie prezentacje multimedialne niezależnie od języka wykładowego mają być przygotowane w języku angielskim – jak to wyjaśniono na wstępie.
    • Ostateczny rozkład czasowy każdej Sesji będzie zależał od decyzji przewodniczącej/przewodniczącego Sesji; decyzje te powinny zapaść nie później niż do 30 sierpnia 2016.
  • Prowadzący sesję jest uprawniony do odebrania głosu referującemu po upływie regulaminowego czasu.
  • Zachowanie dyscypliny czasowej ma na celu umożliwienie uczestnikom Kongresu korzystania z wybranych wykładów wygłaszanych podczas sesji toczących się równolegle.

Sesja Plakatowa:

  • Szerokość plakatu: 80 cm, wysokość plakatu 100 cm.
  • Plakat może być przygotowany w języku polskim lub języku angielskim.
  • Autor prezentujący plakat powinien być przy nim obecny w wyznaczonym czasie podczas przewidzianej dla niego Sesji Plakatowej.
  • Prosimy o zgłoszenie się do biura organizacyjnego z plakatem, nie później niż na 1,5 godziny przed rozpoczęciem Sesji Plakatowej.
  • W biurze organizacyjnym dostępne będą materiały i narzędzia biurowe umożliwiające wywieszenie plakatu.
  • Celem uniknięcia trudności organizacyjnych oraz zastrzeżeń natury technicznej plakaty będą wywieszane przez ich autorów.
  • Autorzy plakatów będą proszeni o zdjęcie plakatów po czasie wyznaczonym przez organizatorów na daną Sesję Plakatową lub jeśli nie będzie takich ograniczeń – na zakończenie Kongresu. Plakaty nie zdjęte w terminie będą musiały być usunięte przez Biuro Organizacyjne Kongresu, które nie może wówczas odpowiadać za ewentualne uszkodzenia lub zniszczenia plakatów.

Zgłoszenie streszczenia pracy jest jednoznaczne ze zgodą autorów na jego druk w materiałach kongresowych, przetwarzanie i udostępnianie danych osobowych podanych podczas rejestracji oraz pracy na potrzeby organizacyjne Kongresu, upublicznienie wyników kwalifikacji, streszczeń, nagród
i wyróżnień na stronie Kongresu jak również w materiałach i publikacjach pokongresowych, jeśli takie miałyby powstać (Komitet Organizacyjny powiadomi o takiej możliwości nie później niż do 30 sierpnia 2016).
Zgłoszenie streszczenia pracy oznacza jednocześnie zaakceptowanie przez autorów powyższego regulaminu zgłaszania prac oraz zasad przebiegu poszczególnych Sesji.